Fabrizio DAMIANO

Fabrizio DAMIANO

Ricercatore Universitario

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11: BIOLOGIA MOLECOLARE.

Dipartimento di Scienze e Tecnologie Biologiche ed Ambientali

Centro Ecotekne Pal. B - S.P. 6, Lecce - Monteroni - LECCE (LE)

Ufficio, Piano terra

Telefono +39 0832 29 8698

Orario di ricevimento

Venerdì ore 15:00-18:00

Nel periodo di emergenza CoViD19, gli studenti dei corsi di Biologia Molecolare, Biotecnologie Biomolecolari, e di Nutrigenomica possono chiedere un colloquio su piattaforma Teams, previo accordi via email.

 

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Curriculum Vitae

Nel 1993 il dott. Fabrizio Damiano  si laurea in Scienze Biologiche discutendo una tesi sperimentale dal titolo: "Studio sull'RNA editing della orf522 nel genoma mitocondriale della linea CMS89 di Girasole", e riportando la votazione di 110/110 con lode.

Nel 1997 ha conseguito il diploma di Specializzazione in Applicazioni Biotecnologiche presso l'Università degli Studi di Bari, discutendo una tesi sperimentale dal titolo: "Complessità del genoma mitocondriale di Avena (Avena sativa)", riportando la votazione di 50/50 con lode.

Nel 2002 ha conseguito il titolo di Dottore di Ricerca in Biochimica e Biologia Molecolare discutendo la tesi dal titolo: Studio dell’espressione di geni per tRNA nei mitocondri di piante superiori.

Dal 2002 ha lavorato presso il laboratorio di Chimica Biologica e Biologia Molecolare del Dipartimento di Scienze e Tecnologie Biologiche ed Ambientali dell’Università del Salento in qualità di tecnico di laboratorio.

Dal 2006 è ricercatore di ruolo del settore scientifico-disciplinare bio/11 Biologia Molecolare presso l’Università del Salento

Nel 2017 ha conseguito l'Abilitazione Nazionale Scientifica per il ruolo di professore associato nel settore BIO/11 Biologia Molecolare 

 

Didattica

A.A. 2020/2021

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Lingua ITALIANO

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Anno accademico di erogazione 2020/2021

Per immatricolati nel 2020/2021

Anno di corso 1

Struttura DIPARTIMENTO DI SCIENZE E TECNOLOGIE BIOLOGICHE ED AMBIENTALI

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE

NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA SPERIMENTALE ED APPLICATA

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Lingua ITALIANO

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Anno accademico di erogazione 2020/2021

Per immatricolati nel 2019/2020

Anno di corso 2

Struttura DIPARTIMENTO DI SCIENZE E TECNOLOGIE BIOLOGICHE ED AMBIENTALI

Percorso NUTRIZIONE UMANA

Sede Lecce

A.A. 2019/2020

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Lingua ITALIANO

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Anno accademico di erogazione 2019/2020

Per immatricolati nel 2019/2020

Anno di corso 1

Struttura DIPARTIMENTO DI SCIENZE E TECNOLOGIE BIOLOGICHE ED AMBIENTALI

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE

NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Lingua ITALIANO

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Anno accademico di erogazione 2019/2020

Per immatricolati nel 2018/2019

Anno di corso 2

Struttura DIPARTIMENTO DI SCIENZE E TECNOLOGIE BIOLOGICHE ED AMBIENTALI

Percorso NUTRIZIONE UMANA

Sede Lecce

A.A. 2018/2019

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Lingua ITALIANO

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Anno accademico di erogazione 2018/2019

Per immatricolati nel 2018/2019

Anno di corso 1

Struttura DIPARTIMENTO DI SCIENZE E TECNOLOGIE BIOLOGICHE ED AMBIENTALI

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE

NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Lingua ITALIANO

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Anno accademico di erogazione 2018/2019

Per immatricolati nel 2017/2018

Anno di corso 2

Struttura DIPARTIMENTO DI SCIENZE E TECNOLOGIE BIOLOGICHE ED AMBIENTALI

Percorso NUTRIZIONE UMANA

Sede Lecce

A.A. 2017/2018

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Lingua ITALIANO

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Anno accademico di erogazione 2017/2018

Per immatricolati nel 2017/2018

Anno di corso 1

Struttura DIPARTIMENTO DI SCIENZE E TECNOLOGIE BIOLOGICHE ED AMBIENTALI

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE

NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Lingua ITALIANO

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Anno accademico di erogazione 2017/2018

Per immatricolati nel 2016/2017

Anno di corso 2

Struttura DIPARTIMENTO DI SCIENZE E TECNOLOGIE BIOLOGICHE ED AMBIENTALI

Percorso NUTRIZIONE UMANA

Sede Lecce

A.A. 2016/2017

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0 Ore Studio individuale: 102.0

Anno accademico di erogazione 2016/2017

Per immatricolati nel 2016/2017

Anno di corso 1

Struttura DIPARTIMENTO DI SCIENZE E TECNOLOGIE BIOLOGICHE ED AMBIENTALI

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE

NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0 Ore Studio individuale: 102.0

Anno accademico di erogazione 2016/2017

Per immatricolati nel 2015/2016

Anno di corso 2

Struttura DIPARTIMENTO DI SCIENZE E TECNOLOGIE BIOLOGICHE ED AMBIENTALI

Percorso NUTRIZIONE UMANA

Sede Lecce - Università degli Studi

A.A. 2015/2016

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0 Ore Studio individuale: 102.0

Anno accademico di erogazione 2015/2016

Per immatricolati nel 2015/2016

Anno di corso 1

Struttura DIPARTIMENTO DI SCIENZE E TECNOLOGIE BIOLOGICHE ED AMBIENTALI

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE

NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0 Ore Studio individuale: 102.0

Anno accademico di erogazione 2015/2016

Per immatricolati nel 2014/2015

Anno di corso 2

Struttura DIPARTIMENTO DI SCIENZE E TECNOLOGIE BIOLOGICHE ED AMBIENTALI

Percorso NUTRIZIONE UMANA

Sede Lecce - Università degli Studi

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BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Per immatricolati nel 2020/2021

Anno accademico di erogazione 2020/2021

Anno di corso 1

Semestre Primo Semestre (dal 05/10/2020 al 22/01/2021)

Lingua ITALIANO

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE (PDS0-2010)

Solide conoscenze dei contenuti forniti nel corso di Biologia Molecolare (corso di studio di I livello)

Il corso è improntato sulle tecnologie innovative di avanguardia nel campo delle biotecnologie biomolecolari finalizzate allo studio e ingegnerizzazione degli acidi nucleici e proteine ​​per applicazioni in settori come la salute umana e animale, l'agricoltura e l'ambiente.

1. Conoscenza e comprensione: Il corso illustrerà le tecnologie biomolecolari finalizzati allo studio del genoma, del trascrittoma e dell'epigenoma, basato principalmente sulle piattaforme di sequenziamento di nuova generazione. Lo studente approfondirà le tecnologie per studiare la regolazione dell'espressione genica a livello molecolare. Infine, verranno presentate le tecniche di ingegneria genetica mediante mutagenesi finalizzate alla produzione di molecole di interesse biotecnologico.

2. Capacità di applicare le conoscenze: Al termine del corso, i corsisti saranno in grado di applicare le conoscenze acquisite delle biotecnologie molecolari in settori come la salute umana e animale, l'agricoltura e l'ambiente.

3. Autonomia di giudizio: i corsisti saranno in grado di integrare le conoscenze e di applicarle nel contesto lavorativo. Attraverso le competenze acquisite, gli studenti avranno la capacità di elaborare un percorso idoneo al raggiungimento di obiettivi strategici nel campo delle biotecnologie.
4. Abilità comunicative: attraverso una buona padronanza delle biotecnologie molecolari, i corsisti sapranno comunicare in modo chiaro le conoscenze e competenze acquisite, abilità fondamentali soprattutto in un contesto lavorativo multidisciplinare.
5. Capacità di apprendere. Attraverso il corso, i corsisti acquisiranno il metodo di studio, fondamentale per l’aggiornamento delle conoscenze e la formazione, attraverso la ricerca e l’uso di risorse di informazione scientifica (Banche dati, letteratura scientifica).

Sono previsti 6 CFU di lezioni teoriche (48 ore).

Il conseguimento dei crediti attribuiti all’insegnamento è ottenuto mediante prova orale con votazione finale in trentesimi ed eventuale lode.

La valutazione degli studenti è effettuata mediante prova orale, mirata ad accertare:

- Il livello delle conoscenze teoriche acquisite attraverso la presentazione di argomenti del programma (40%)

- la capacità di applicare le conoscenze acquisite e l’autonomia di giudizio, attraverso l’elaborazione di una strategia volta alla soluzione di problematiche inerenti le biotecnologie molecolari (30%).

- la capacità di apprendere e le abilità comunicative, attraverso la consultazione di lavori scientifici inerenti le biotecnologie molecolari (30%).

Il calendario degli appelli d'esame è consultabile al sito:

https://www.scienzemfn.unisalento.it/536

 

Genoma negli Eucarioti: struttura e regolazione di geni eucariotici. PCR: principi teorici e alcune applicazioni: PCR asimmetrica; PCR inversa; Nested PCR-5’ RACE e 3’ RACE. Degenerate PCR. Obiettivi dell’ingegneria proteica: Mutagenesi sito specifica e per inserzione e delezione. Overlap extension PCR, Assembly PCR, Megaprimer PCR; Mutagenesi con fagemide M13; selezione mutanti con fosforotioati; metodo di Kunkel; Quikchange PCR. Mutagenesi semi-random e random; Evoluzione guidata in vitro mediante DNA shuffling. Strategie di clonaggio di prodotti di amplificazione. PCR qualitativa. Quantificazione del livello di espressione mediante tecniche basate sull'ibridazione di sonde e PCR. PCR quantitativa e semiquantitativa; Real Time PCR. Digital PCR. Sequenziamento del DNA; metodo di Sanger e pyrosequencing; Next Generation Sequencing - nuove piattaforme di sequenziamento. .Strategie di sequenziamento di genomi: il progetto genoma umano.

Analisi strutturale e funzionale di un promotore. Analisi delezionale del promotore, EMSA-CHIP assay. Chip-on-Chip. Genome Editing: Zinc Finger Nucleasi, Talen, CRISPR-Case. Approcci Biomolecolari per lo studio dell'epigenomica. Non coding RNA: classi, ruoli e metodi di studio.

Libro di testo:

Biologia Molecolare. Amaldi, Benedetti, Pesole, Plevani. CEA
Biotecnologie Molecolari - Brown.

Materiale didattico fornito durante il corso: articoli, reviews e slides delle lezioni.

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI (BIO/11)
NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA SPERIMENTALE ED APPLICATA

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Per immatricolati nel 2019/2020

Anno accademico di erogazione 2020/2021

Anno di corso 2

Semestre Primo Semestre (dal 05/10/2020 al 22/01/2021)

Lingua ITALIANO

Percorso NUTRIZIONE UMANA (A33)

Sede Lecce

Solide conoscenze dei contenuti forniti nel corso di Biologia Molecolare (corso di studio di I livello)

Il corso è focalizzato sulla nutrigenomica, ossia lo studio degli effetti degli alimenti e dei costituenti alimentari sull'espressione genica e sui processi cellulari. La nutrigenomica si concentra sulla complessa interazione tra i nutrienti e altri composti bioattivi dietetici con il genoma a livello molecolare, per conoscere come specifici nutrienti o regimi dietetici possono influenzare la salute dell’uomo. Il fine ultimo della nutrigenomica è quello di comprendere come una corretta e mirata alimentazione può contribuire a prevenire alcune patologie nell'uomo, ed in particolare le malattie metaboliche, neurodegenerative e neoplastiche, nonché danni ossidativi e invecchiamento cellulare.

Obiettivi formativi in relazione ai descrittori di Dublino:

1. Conoscenza e comprensione: Al termine del corso i corsisti conosceranno i fondamenti teorici dell’importante ruolo dei nutrienti nel condizionare in modo armonioso i vari processi metabolici e cellulari. Saranno in grado di comprendere: l’organizzazione del genoma, i meccanismi di regolazione dell’espressione dei geni e le loro complesse interazioni con i nutrienti assunti con la dieta, gli strumenti e i modelli di studio utilizzati nella nutrigenomica.

2. Capacità di applicare le conoscenze: Al termine del corso, i corsisti saranno in grado di applicare le conoscenze acquisite e riflettere sulla complessa interrelazione esistente tra la condizione di benessere e di salute dell’uomo e l’assunzione di diete equilibrate nel contenuto e nella qualità. Saranno in grado di promuovere atteggiamenti propositivi verso i nutrienti della dieta che condizionano positivamente il corretto funzionamento della cellula.

3. Autonomia di giudizio: i corsisti saranno in grado di integrare le conoscenze e di applicarle nel contesto lavorativo. Essi saranno in grado di identificare i fattori di rischio per la salute umana associati ad alterazioni del metabolismo e dei processi cellulari connessi alla cattiva alimentazione.

4. Abilità comunicative: attraverso una buona padronanza della complessa interazione tra nutrienti e il genoma, i corsisti sapranno comunicare in modo chiaro le conoscenze e competenze acquisite. In particolare, queste abilità sono fondamentali in un contesto lavorativo nell’interazione con i colleghi, personale sanitario, famiglie e personale della scuola.

5. Capacità di apprendere. Attraverso il corso, i corsisti acquisiranno il metodo di studio, fondamentale per l’aggiornamento delle conoscenze e la formazione, attraverso la ricerca e l’uso di risorse di informazione scientifica (Banche dati, letteratura scientifica).

Sono previsti 6 CFU di lezioni teoriche (48 ore).

Il conseguimento dei crediti attribuiti all’insegnamento è ottenuto mediante prova orale corredata da una
presentazione di un elaborato individuale, con votazione finale in trentesimi ed eventuale lode.
La valutazione tiene conto:
- del livello di conoscenze teoriche acquisite (40%)
- della capacità di applicare le conoscenze acquisite e dell’autonomia di giudizio attraverso collegamenti tra i
fondamenti della nutrigenomica e i fattori di rischio per la salute umana associati alla cattiva alimentazione (30%).
- della capacità di apprendere, delle abilità comunicative, attraverso la consultazione di lavori scientifici e loro
elaborazione con la presentazione finale di un elaborato (30%).

Il calendario degli appelli d'esame è consultabile al sito:

https://www.scienzemfn.unisalento.it/536

Genoma negli Eucarioti: Struttura e regolazione di geni eucariotici - Lo splicing - Trascrizione, struttura
promotori. Fattori trascrizionali, struttura e modalità di attivazione. Controllo combinatorio.
La nutrigenomica e le altre scienze -omiche, obiettivi e strategie per lo studio dell’interazione nutrienti-genoma. Principali fattori trascrizionali regolati dai nutrienti: SREBP, PPAR, FoxO, LXR e RXR.
Ruolo dei fattori trascrizionali nelle patologie umane, tra cui sindrome metabolica e obesità.

Libri di testo (a scelta):

Il gene X; Lewin, Krebs, Goldstein, Kilpatrick. Zanichelli

Biologia Molecolare; Zlatanova,  van Holde. Zanichelli

Biologia Molecolare; Amaldi, Benedeti, Pesole, Plevani. CEA

Materiale didattico fornito durante il corso: articoli, reviews e slides delle lezioni.

NUTRIGENOMICA (BIO/11)
BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Per immatricolati nel 2019/2020

Anno accademico di erogazione 2019/2020

Anno di corso 1

Semestre Primo Semestre (dal 30/09/2019 al 17/01/2020)

Lingua ITALIANO

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE (PDS0-2010)

Solide conoscenze dei contenuti forniti nel corso di Biologia Molecolare  (corso di studio di I livello) 

Il corso è improntato sulle tecnologie innovative di avanguardia nel campo delle biotecnologie biomolecolari finalizzate allo studio e ingegnerizzazione degli acidi nucleici e proteine ​​per applicazioni in settori come la salute umana e animale, l'agricoltura e l'ambiente.

Il corso illustra le tecniche di biologia molecolare finalizzate allo studio del genoma, del trascrittoma e dell'epigenoma, basate principalmente sulle piattaforme di sequenziamento di nuova generazione. Inoltre, obiettivo del corso è illustrare allo studente le strategie per lo studio a livello molecolare dei meccanismi di regolazione dell'espressione genica. Infine, vengono presentate le tecniche di ingegneria genetica mediante mutagenesi finalizzate alla produzione di molecole di interesse biotecnologico.

Sono previsti 6 CFU di lezioni teoriche (48 ore).

La valutazione degli studenti è effettuata mediante prova orale, mirata ad accertare:

- Il livello delle conoscenze teoriche acquisite attraverso la presentazione di argomenti del programma (70%)

- La capacità di integrare le conoscenze teoriche acquisite, applicandole nella soluzione di problematiche inerenti le biotecnologie molecolari (30%).

29/01/2020, ore 10.30

20/02/2020,  ore 15.30

26/02/2020,  ore 15.30

20/05/2020,  ore 15.00 (Appello per laureandi e per fuori corso)

18/06/2020, ore 10.00

9/07/2020,  ore 10.00

23/07/2020,  ore 10.00

24/09/2020, ore 10.30

19/11/2020, ore 15.00 (Appello per laureandi e per fuori corso)

Genoma negli Eucarioti: struttura e regolazione di geni eucariotici

PCR: principi teorici e alcune applicazioni: PCR asimmetrica; PCR inversa; Nested PCR-5’ RACE e 3’ RACE. Degenerate PCR.

Obiettivi dell’ingegneria proteica: Mutagenesi sito specifica e per inserzione e delezione. Overlap extension PCR, Assembly PCR, Megaprimer PCR; Mutagenesi con fagemide M13; selezione mutanti con fosforotioati; metodo di Kunkel; Quikchange PCR. Mutagenesi semi-random e random, evoluzione guidata in vitro mediante DNA shuffling.

Strategie di clonaggio di prodotti di amplificazione. PCR qualitativa.

Quantificazione del livello di espressione mediante tecniche basate sull'ibridazione di sonde e PCR. PCR quantitativa e semiquantitativa; Real Time PCR. Digital PCR

Sequenziamento del DNA; metodo di Sanger e pyrosequencing; Next Generation Sequencing - nuove piattaforme di sequenziamento.

Strategie di sequenziamento di genomi: il progetto genoma umano.

Analisi strutturale e funzionale di un promotore. Analisi delezionale del promotore, EMSA-CHIP assay. Chip-on-Chip.

Genome Editing: Zinc Finger Nucleasi, Talen, CSIPR-Case. 

Approcci Biomolecolari per lo studio dell'epigenomica.

Non coding RNA: classi, ruoli e metodi di studio.

Materiale fornito durante il corso: Slides delle lezioni, articoli, reviews.

Biologia Molecolare del Gene vol. II – Watson et al.
Il Gene - Lewin.
Biotecnologia Molecolare - Glick e Pasternak.
Biotecnologie Molecolari - Terry e Brown.

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI (BIO/11)
NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Per immatricolati nel 2018/2019

Anno accademico di erogazione 2019/2020

Anno di corso 2

Semestre Primo Semestre (dal 07/10/2019 al 24/01/2020)

Lingua ITALIANO

Percorso NUTRIZIONE UMANA (A33)

Sede Lecce

Solide conoscenze dei contenuti forniti nel corso di Biologia Molecolare (corso di studio di I livello)

Il corso è focalizzato sulla nutrigenomica, ossia  lo studio degli effetti degli alimenti e dei costituenti alimentari sull'espressione genica e di come le variazioni genetiche influenzano l'ambiente nutrizionale. La nutrigenomica si concentra sulla comprensione dell'interazione tra nutrienti e altri composti bioattivi dietetici con il genoma a livello molecolare, per capire come specifici nutrienti o regimi dietetici possono influenzare la salute umana.

Il corso di insegnamento si propone di fornire allo studente le conoscenze di base nell’ambito della organizzazione del genoma e meccanismi di regolazione  dell'espressione negli eucarioti. Saranno descritti dettagliatamente gli obiettivi della nutrigenomica finalizzati a individuare la dieta più adatta al raggiungimento del benessere del singolo individuo. Saranno approfonditi i meccanismi molecolari attraverso cui i principali nutrienti della dieta possono influenzare l'espressione di geni coinvolti nelle vie metaboliche e in altri processi cellulari. Il fine ultimo del corso è quello di comprendere come una corretta e mirata alimentazione contribuisce a prevenire un considerevole numero di patologie nell'uomo, quali le malattie metaboliche, neurodegenerative e neoplastiche, nonché danni ossidativi e invecchiamento cellulare.

Sono previsti 6 CFU di lezioni teoriche (48 ore).

Il conseguimento dei crediti attribuiti all’insegnamento è ottenuto mediante prova orale con votazione finale in trentesimi ed eventuale lode.
La valutazione tiene conto:
- del livello di conoscenze teoriche acquisite (50%)
- della capacità di collegare gli aspetti della biologia molecolare dell'uomo con quelli pertinenti della nutrigenomica (30%)
- delle abilità comunicative (20%)

19/11/2019, Ore 15:30 (appello straordinario per fuori corso e iscritti al II anno)

27/01/2020, Ore 15:00

11/02/2020, Ore 15:00

23/02/2020, Ore 15:00

17/03/2020, Ore 15:30 (appello straordinario per fuori corso e iscritti al II anno)

20/05/2020, Ore 15:30 (appello straordinario per fuori corso e iscritti al II anno)

23/06/2020, Ore 15:00

7/07/2020, Ore 15:00

21/07/2020, Ore 15:00

15/09/2020, Ore 15:00

Genoma negli Eucarioti: Struttura e regolazione di geni eucariotici - Lo splicing - Trascrizione, struttura promotori.

Fattori trascrizionali, struttura e modalità di attivazione. Controllo combinatorio.

La nutrigenomica e le altre scienze -omiche, obiettivi e strategie per lo studio dell’interazione nutrienti-genoma.

Principali fattori trascrizionali regolati dai nutrienti: SREBP, PPAR, FoxO, LXR e RXR.

Ruolo dei fattori trascrizionali nella sindrome metabolica e nell’obesità.

Il Gene VIII Lewin.
Materiale didattico fornito durante il corso: articoli, reviews e slides delle lezioni.

NUTRIGENOMICA (BIO/11)
BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Per immatricolati nel 2018/2019

Anno accademico di erogazione 2018/2019

Anno di corso 1

Semestre Primo Semestre (dal 01/10/2018 al 11/01/2019)

Lingua ITALIANO

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE (PDS0-2010)

Solide conoscenze dei contenuti forniti nel corso di Biologia Molecolare  (corso di studio di I livello) 

Il corso illustra le tecniche di biologia molecolare finalizzate allo studio del genoma, del trascrittoma e dell'epigenoma, basate principalmente sulle piattaforme di sequenziamento di nuova generazione. Inoltre, obiettivo del corso è illustrare allo studente le strategie per lo studio a livello molecolare dei meccanismi di regolazione dell'espressione genica. Infine, vengono presentate le tecniche di ingegneria genetica mediante mutagenesi finalizzate alla produzione di molecole di interesse biotecnologico.

Sono previsti 6 CFU di lezioni teoriche (48 ore).

La valutazione degli studenti è effettuata mediante prova orale, mirata ad accertare:

- Il livello delle conoscenze teoriche acquisite attraverso la presentazione di argomenti del programma (70%)

- La capacità di integrare le conoscenze teoriche acquisite, applicandole nella soluzione di problematiche inerenti le biotecnologie molecolari (30%).

23/01/2019, ore 15.00

07/02/2019,  ore 15.00

21/02/2019,  ore 15.00

23/05/2019,  ore 15.00 (Appello per laureandi e per fuori corso)

13/06/2019, ore 10.00

11/07/2019,  ore 10.00

25/07/2019,  ore 10.00

27/09/2019, ore 10.00

27/11/2019, ore 15.30 (Appello per laureandi e per fuori corso)

Genoma negli Eucarioti: struttura e regolazione di geni eucariotici

Organizzazione genomica di virus eucariotici usati come vettori molecolari.

PCR: principi teorici e alcune applicazioni: PCR asimmetrica; PCR inversa; Nested PCR-5’ RACE e 3’ RACE. Degenerate PCR.

Obiettivi dell’ingegneria proteica: Mutagenesi sito specifica e per inserzione e delezione. Overlap extension PCR, Assembly PCR, Megaprimer PCR; Mutagenesi con fagemide M13; selezione mutanti con fosforotioati; metodo di Kunkel; Quikchange PCR. Mutagenesi semi-random e random, evoluzione guidata in vitro mediante DNA shuffling.

Strategie di clonaggio di prodotti di amplificazione. PCR qualitativa.

Quantificazione del livello di espressione mediante tecniche basate sull'ibridazione di sonde e PCR. PCR quantitativa e semiquantitativa; Real Time PCR.

Sequenziamento del DNA; metodo di Sanger e pyrosequencing; Next Generation Sequencing : nuove piattaforme di sequenziamento.

Strategie di sequenziamento di genomi: il progetto genoma umano.

Analisi strutturale e funzionale di un promotore-EMSA-CHIP assay. Chip-on-Chip.

Materiale fornito durante il corso: Slides delle lezioni, articoli, reviews.

Biologia Molecolare del Gene vol. II – Watson et al.
Il Gene - Lewin.
Biotecnologia Molecolare - Glick e Pasternak.
Biotecnologie Molecolari - Terry e Brown.

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI (BIO/11)
NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Per immatricolati nel 2017/2018

Anno accademico di erogazione 2018/2019

Anno di corso 2

Semestre Primo Semestre (dal 08/10/2018 al 25/01/2019)

Lingua ITALIANO

Percorso NUTRIZIONE UMANA (A33)

Sede Lecce

Solide conoscenze dei contenuti forniti nel corso di Biologia Molecolare (corso di studio di I livello)

Il corso di insegnamento si propone di fornire allo studente le conoscenze di base nell’ambito della organizzazione del genoma e meccanismi di regolazione  dell'espressione negli eucarioti. Saranno descritti dettagliatamente gli obiettivi della nutrigenomica finalizzati a individuare la dieta più adatta al raggiungimento del benessere del singolo individuo. Saranno approfonditi i meccanismi molecolari attraverso cui i principali nutrienti della dieta possono influenzare l'espressione di geni coinvolti nelle vie metaboliche e in altri processi cellulari. Il fine ultimo del corso è quello di comprendere come una corretta e mirata alimentazione contribuisce a prevenire un considerevole numero di patologie nell'uomo, quali le malattie metaboliche, neurodegenerative e neoplastiche, nonché danni ossidativi e invecchiamento cellulare.

Sono previsti 6 CFU di lezioni teoriche (48 ore).

Il conseguimento dei crediti attribuiti all’insegnamento è ottenuto mediante prova orale con votazione finale in trentesimi ed eventuale lode.
La valutazione tiene conto:
- del livello di conoscenze teoriche acquisite (50%)
- della capacità di collegare gli aspetti della biologia molecolare dell'uomo con quelli pertinenti della nutrigenomica (30%)
- delle abilità comunicative (20%)

28/11/2019, Ore 15:00 (appello straordinario per fuori corso e iscritti al II anno)

29/01/2019, Ore 15:00

20/02/2019, Ore 15:00

6/03/2019, Ore 15:00

27/03/2019, Ore 15:00 (appello straordinario per fuori corso e iscritti al II anno)

15/05/2019, Ore 15:00 (appello straordinario per fuori corso e iscritti al II anno)

26/06/2019, Ore 15:00

3/07/2019, Ore 15:00

17/07/2019, Ore 15:00

18/09/2019, Ore 15:00

Genoma negli Eucarioti: Struttura e regolazione di geni eucariotici - Lo splicing - Trascrizione, struttura promotori.

Fattori trascrizionali, struttura e modalità di attivazione. Controllo combinatorio.

La nutrigenomica e le altre scienze -omiche, obiettivi e strategie per lo studio dell’interazione nutrienti-genoma.

Principali fattori trascrizionali regolati dai nutrienti: SREBP, PPAR, FoxO, LXR e RXR.

Ruolo dei fattori trascrizionali nella sindrome metabolica e nell’obesità.

Il Gene VIII Lewin.
Materiale didattico fornito durante il corso: articoli, reviews e slides delle lezioni.

NUTRIGENOMICA (BIO/11)
BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Per immatricolati nel 2017/2018

Anno accademico di erogazione 2017/2018

Anno di corso 1

Semestre Primo Semestre (dal 02/10/2017 al 12/01/2018)

Lingua ITALIANO

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE (PDS0-2010)

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI (BIO/11)
NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0

Per immatricolati nel 2016/2017

Anno accademico di erogazione 2017/2018

Anno di corso 2

Semestre Primo Semestre (dal 02/10/2017 al 19/01/2018)

Lingua ITALIANO

Percorso NUTRIZIONE UMANA (A33)

Sede Lecce

NUTRIGENOMICA (BIO/11)
BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0 Ore Studio individuale: 102.0

Per immatricolati nel 2016/2017

Anno accademico di erogazione 2016/2017

Anno di corso 1

Semestre Primo Semestre (dal 03/10/2016 al 13/01/2017)

Lingua

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE (PDS0-2010)

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI (BIO/11)
NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0 Ore Studio individuale: 102.0

Per immatricolati nel 2015/2016

Anno accademico di erogazione 2016/2017

Anno di corso 2

Semestre Primo Semestre (dal 03/10/2016 al 20/01/2017)

Lingua

Percorso NUTRIZIONE UMANA (A33)

Sede Lecce - Università degli Studi

NUTRIGENOMICA (BIO/11)
BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0 Ore Studio individuale: 102.0

Per immatricolati nel 2015/2016

Anno accademico di erogazione 2015/2016

Anno di corso 1

Semestre Primo Semestre (dal 05/10/2015 al 15/01/2016)

Lingua

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE (PDS0-2010)

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI (BIO/11)
NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0 Ore Studio individuale: 102.0

Per immatricolati nel 2014/2015

Anno accademico di erogazione 2015/2016

Anno di corso 2

Semestre Primo Semestre (dal 05/10/2015 al 22/01/2016)

Lingua

Percorso NUTRIZIONE UMANA (A33)

Sede Lecce - Università degli Studi

NUTRIGENOMICA (BIO/11)
BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0 Ore Studio individuale: 102.0

Per immatricolati nel 2014/2015

Anno accademico di erogazione 2014/2015

Anno di corso 1

Semestre Primo Semestre (dal 06/10/2014 al 16/01/2015)

Lingua

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE (PDS0-2010)

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI (BIO/11)
NUTRIGENOMICA

Corso di laurea BIOLOGIA

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0 Ore Studio individuale: 102.0

Per immatricolati nel 2013/2014

Anno accademico di erogazione 2014/2015

Anno di corso 2

Semestre Primo Semestre (dal 06/10/2014 al 23/01/2015)

Lingua

Percorso NUTRIZIONE UMANA (A33)

Sede Lecce - Università degli Studi

NUTRIGENOMICA (BIO/11)
BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI

Corso di laurea BIOTECNOLOGIE MEDICHE E NANOBIOTECNOLOGIE

Settore Scientifico Disciplinare BIO/11

Tipo corso di studio Laurea Magistrale

Crediti 6.0

Ripartizione oraria Ore Attività frontale: 48.0 Ore Studio individuale: 102.0

Per immatricolati nel 2013/2014

Anno accademico di erogazione 2013/2014

Anno di corso 1

Semestre Primo Semestre (dal 07/10/2013 al 17/01/2014)

Lingua

Percorso PERCORSO GENERICO/COMUNE (PDS0-2010)

BIOTECNOLOGIE BIOMOLECOLARI (BIO/11)

Pubblicazioni

 

  1. Giudetti AM, Testini M, Vergara D, Priore P, Damiano F, Gallelli CA, Romano A, Villani R, Cassano T, Siculella L, Gnoni GV, Moles A, Coccurello R, Gaetani S. (2018). Chronic psychosocial defeat differently affects lipid metabolism in liver and white adipose tissue and induces hepatic oxidative stress in mice fed a high-fat diet. FASEB J. 2018 Aug 22:fj201801130R. doi: 10.1096/fj.201801130R. 

  2. Talà A, Damiano F, Gallo G, Pinatel E, Calcagnile M, Testini M, Fico D, Rizzo D, Sutera A, Renzone G, Scaloni A, De Bellis G, Siculella L, De Benedetto GE, Puglia AM, Peano C, Alifano P. (2018)  Pirin: A novel redox-sensitive modulator of primary and secondary metabolism in Streptomyces. Metab Eng. 2018 48:254-268.

  3. Calabriso N, Gnoni A, Stanca E, Cavallo A, Damiano F, Siculella L, Carluccio MA. (2018) Hydroxytyrosol ameliorates endothelial function under inflammatory conditions by preventing mitochondrial dysfunction. Oxid Med Cell Longev 2018 (2018), Article IF 9086947.
  4. Damiano F, Testini M, Tocci R, Gnoni GV, Siculella L. (2018) Translational control of human acetyl-CoA carboxylase 1 mRNA is mediated by an internal ribosome entry site in response to ER stress, serum deprivation or hypoxia mimetic CoCl Biochimica et Biophysica Acta - Molecular and Cell Biology of Lipids, 1863(4):388-398.
  5. Calcagnile M, Bettini S, Damiano F, Talà A, Tredici S, Pagano R, Di Salvo M, Siculella L, Fico D, De Benedetto E G, Valli L, Alifano P. (2018) Stimulatory effects of methyl-β-cyclodextrin on spiramycin production, and physical chemical characterization of nonhost@guest complexes. ACS Omega, 3(3):2470-2478.
  6. Priore P, Gnoni A, Natali F, Testini M, Gnoni GV, Siculella L, Damiano F. (2017) Oleic Acid and Hydroxytyrosol inhibit Cholesterol and Fatty Acid Sinthesis in C6 Glioma Cells. Oxid Med Cell Longev 2017 (2017), Article IF 9076052
  7. Fondi M, Pinatel E, Talà A, Damiano F, Consolandi C, Mattorre B, Fico D, Testini M, De Benedetto GE, Siculella L De Bellis G, Alifano P, Peano C (2017) Time-Resolved Transcriptomics and Constraint-Based Modeling Identify Sistem-Level Metabolic Features and Overexpression Targets to Increase Spiramycin production in Streptomyces ambofaciens. Front Microbiol. 8:83
  8. Demitri C, Lamanna L, De Benedetto E, Damiano F, Cappello MS, Siculella L, Sannino A. (2017) Encapsulation of Lactobacillus kefiri in alginate microbeads using a double novel aerosol technque. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 77:548-555.
  9. Damiano F, Rochira A, Gnoni A, Siculella L. (2017) Action of Thyroid Hormones, T3 and T2, on Hepatic Fatty Acids: Differences in Metabolic Effects and Molecular Mechanisms. Int J Mol Sci. 18(4):E744.
  10. Cavallo A, Taurino F, Damiano F, Siculella L, Sardanelli AM, Gnoni A. (2016) Acute administration of 3,5-diiodo-L-thyronine to htpothyroid rats stimulates bioenergetic parameters in liver mitochondria. J Bioenerg Biomembr. 48(5):521-529.
  11. Lunetti P, Damiano F, De Benedetto G, Siculella L, Pennetta A, Muto L, Paradies E, Marobbio CM, Dolce V, Capobianco L. (2016) Characterization of Human and Yeast Mitochondrial Glycine Carriers with Implications for Heme Biosynthesis and Anemia. J Biol Chem. 291(38):19746-5
  12. Giudetti AM, Stanca E, Siculella L, Gnoni GV, Damiano F. (2016) Nutritional and Hormonal Regulation of Citrate and Carnitine/Acylcarnitine Transporters: Two Mitochondrial Carriers Involved in Fatty Acid Metabolism. Int J Mol Sci. 17(6). pii: E817.
  13. Siculella L, Tocci R, Rochira A, Testini M, Gnoni A, Damiano F. (2016) Lipid accumulation stimulates the cap-independent translation of SREBP-1a mRNA by promoting hnRNP A1 binding to its 5'-UTR in a cellular model of hepatic steatosis. Biochim Biophys Acta. 1861(5), pp. 471-481.
  14. Damiano, F., Tocci, R., Gnoni, G.V., Siculella, L. Expression of citrate carrier gene is activated by ER stress effectors XBP1 and ATF6α, binding to an UPRE in its promoter (2015) Biochimica et Biophysica Acta - Gene Regulatory Mechanisms, 1849 (1), pp. 23-31.
  15. Priore, P., Cavallo, A., Gnoni, A., Damiano, F., Gnoni, G.V., Siculella, L. Modulation of hepatic lipid metabolism by olive oil and its phenols in nonalcoholic fatty liver disease (2015) IUBMB Life, 67 (1), pp. 9-17.
  16. Ferramosca, A., Conte, A., Damiano, F., Siculella, L., Zara, V. Differential effects of high-carbohydrate and high-fat diets on hepatic lipogenesis in rats (2014) European Journal of Nutrition, 53 (4), pp. 1103-11
  17. Peano, C., Damiano, F., Forcato, M., Pietrelli, A., Palumbo, C., Corti, G., Siculella, L., Fuligni, F., Tagliazucchi, G.M., De Benedetto, G.E., Bicciato, S., De Bellis, G., Alifano, P. Comparative genomics revealed key molecular targets to rapidly convert a reference rifamycin-producing bacterial strain into an overproducer by genetic engineering (2014) Metabolic Engineering, 26, pp. 1-16.
  18. Rochira, A., Damiano, F., Marsigliante, S., Gnoni, G.V., Siculella, L. (2013) 3,5-Diiodo-l-thyronine induces SREBP-1 proteolytic cleavage block and apoptosis in human hepatoma (Hepg2) cells. Biochimica et Biophysica Acta - Molecular and Cell Biology of Lipids, 1831 (12), pp. 1679-1689.
  19. Giudetti, A.M., Damiano, F., Gnoni, G.V., Siculella, L. Low level of hydrogen peroxide induces lipid synthesis in BRL-3A cells through a CAP-independent SREBP-1a activation (2013) International Journal of Biochemistry and Cell Biology, 45 (7), pp. 1419-1426.
  20. Damiano, F., Rochira, A., Tocci, R., Alemanno, S., Gnoni, A., Siculella, L. hnRNP A1 mediates the activation of the IRES-dependent SREBP-1a mRNA translation in response to endoplasmic reticulum stress (2013) Biochemical Journal, 449 (2), pp. 543-553.
  21. Gnoni, G.V., Rochira, A., Leone, A., Damiano, F., Marsigliante, S., Siculella, L. 3,5,3′triiodo-L-thyronine induces SREBP-1 expression by non-genomic actions in human HEP G2 cells (2012) Journal of Cellular Physiology, 227 (6), pp. 2388-2397.
  22. Damiano, F., Gnoni, G.V., Siculella, L. Citrate carrier promoter is target of peroxisome proliferator-activated receptor alpha and gamma in hepatocytes and adipocytes (2012) International Journal of Biochemistry and Cell Biology, 44 (4), pp. 659-668.
  23. Damiano, F., Mercuri, E., Stanca, E., Gnoni, G.V., Siculella, L. Streptozotocin-induced diabetes affects in rat liver citrate carrier gene expression by transcriptional and posttranscriptional mechanisms (2011) International Journal of Biochemistry and Cell Biology, 43 (11), pp. 1621-1629.
  24. Siculella, L., Damiano, F., Di Summa, R., Tredici, S.M., Alduina, R., Gnoni, G.V., Alifano, P. Guanosine 5′-diphosphate 3′-diphosphate (ppGpp) as a negative modulator of polynucleotide phosphorylase activity in a 'rare' actinomycete (2010) Molecular Microbiology, 77 (3), pp. 716-729.
  25. Damiano, F., Alemanno, S., Gnoni, G.V., Siculella, L. Translational control of the sterol-regulatory transcription factor SREBP-1 mRNA in response to serum starvation or ER stress is mediated by an internal ribosome entry site (2010) Biochemical Journal, 429 (3), pp. 603-612.
  26. Gnoni, G.V., Giudetti, A.M., Mercuri, E., Damiano, F., Stanca, E., Priore, P., Siculella, L. Reduced activity and expression of mitochondrial citrate carrier in streptozotocin-induced diabetic rats (2010) Endocrinology, 151 (4), pp. 1551-1559.
  27. Mangiullo, R., Gnoni, A., Damiano, F., Siculella, L., Zanotti, F., Papa, S., Gnoni, G.V. (2010) 3,5-diiodo-L-thyronine upregulates rat-liver mitochondrial FoF1-ATP synthase by GA-binding protein/nuclear respiratory factor-2. Biochimica et Biophysica Acta - Bioenergetics, 1797 (2), pp. 233-240.
  28. Damiano, F., Gnoni, G.V., Siculella, L. Functional analysis of rat liver citrate carrier promoter: Differential responsiveness to polyunsaturated fatty acids (2009) Biochemical Journal, 417 (2), pp. 561-571.
  29. Placido, A., Damiano, F., Sciancalepore, M., De Benedetto, C., Rainaldi, G., Gallerani, R. Comparison of promoters controlling on the sunflower mitochondrial genome the transcription of two copies of the same native trnK gene reveals some differences in their structure (2006) Biochimica et Biophysica Acta - Bioenergetics, 1757 (9-10), pp. 1207-1216.
  30. Placido, A., Damiano, F., Losacco, M., Rainaldi, G., De Benedetto, C., Gallerani, R. (2006) Variable structures of promoters regulating transcription of cp-like tRNA genes and of some native genes on the sunflower mitochondrial genome (2006) Gene, 371 (1), pp. 93-101.
  31. Vigliotta, G., Tredici, S.M., Damiano, F., Montinaro, M.R., Pulimeno, R., Di Summa, R., Massardo, D.R., Gnoni, G.V., Alifano, P. Natural merodiploidy involving duplicated rpoB alleles affects secondary metabolism in a producer actinomycete (2005) Molecular Microbiology, 55 (2), pp. 396-412.
  32. Siculella, L., Sabetta, S., Damiano, F., Giudetti, A.M., Gnoni, G.V. Different dietary fatty acids have dissimilar effects on activity and gene expression of mitochondrial tricarboxylate carrier in rat liver (2004) FEBS Letters, 578 (3), pp. 280-284.
  33. Technikova-Dobrova, Z., Damiano, F., Tredici, S.M., Vigliotta, G., Di Summa, R., Palese, L., Abbrescia, A., Labonia, N., Gnoni, G.V., Alifano, P. Design of mineral medium for growth of Actinomadura sp. ATCC 39727, producer of the glycopeptide A40926: Effects of calcium ions and nitrogen sources (2004) Applied Microbiology and Biotechnology, 65 (6), pp. 671-677.
  34. Siculella, L., Damiano, F., Sabetta, S., Gnoni, G.V. (2004) n-6 PUFAs downregulate expression of the tricarboxylate carrier in rat liver by transcriptional and posttranscriptional mechanisms. Journal of Lipid Research, 45 (7), pp. 1333-1340.
  35. Giudetti, A.M., Sabetta, S., Di Summa, R., Leo, M., Damiano, F., Siculella, L., Gnoni, G.V. (2003) Differential effects of coconut oil- and fish oil-enriched diets on tricarboxylate carrier in rat liver mitochondria. Journal of Lipid Research, 44 (11), pp. 2135-2141.
  36. Damiano, F., Ceci, L.R., Siculella, L., Gallerani, R. Transcription of two sunflower (Helianthus annuus L.) mitochondrial tRNA genes having different genetic origins (2002) Gene, 286 (1), pp. 25-32.
  37. Siculella, L., Damiano, F., Cortese, M.R., Dassisti, E., Rainaldi, G., Gallerani, R., De Benedetto, C. Gene content and organization of the oat mitochondrial genome (2001) Theoretical and Applied Genetics, 103 (2-3, pp 359-365
  38. Damiano F., Gallerani, R., Liuni S., Licciulli, F., Ceci L.R. (2001) PLMItRNA, adatabase for mitichondrial tRNA genes and tRNAs in photosynthetic eukariotes, Nucleic Acid Research , 29 (1), pp.167-168

       Ha partecipato a diversi congressi nazionali e internazionali, con comunicaioni orali.

Temi di ricerca

La sua attività di ricerca, oggetto di numerose pubblicazioni su importanti riviste scientifiche internazionali del settore della Biochimica e della Biologia Molecolare, ha principalmente riguardato:

 

  • ·         Studio dei meccanismi molecolari e analisi dell'espressione di geni codificanti per enzimi lipogenici in differenti condizioni nutrizionali e ormonali (ipo- e ipertiroidismo, diabete, ecc.);
  • ·         Studio dell’espressione dei geni del metabolismo lipidico nella steatosi epatica non alcolica;
  • ·         Isolamento di ceppi batterici produttori di antibiotici migliori in termini qualitativi e/o quantitativi di quelli attualmente utilizzati o disponibili;
  • ·         Modifica del metabolismo intermedio e secondario in ceppi produttori antibiotici finalizzata all’incremento della crescita e della produzione di antibiotico;
  • ·         Caratterizzazione strutturale e funzionale di promotori di geni coinvolti nel metabolismo lipidico.

Risorse correlate

Documenti